AbA非常適合用作陽性克隆子篩選用的藥物選擇性標記。AbA抗性也是酵母單/雙雜交研究中理想的報告子。本品為溶于甲醇的AbA溶液，濃度為1 mg/ml。具體的工作濃度取決于宿主細胞的敏感度(見表1. AbA對各種酵母菌的低抑菌濃度(MIC))。

　　金擔子素A的操作步驟(抗AbA的酵母轉化系統)

　　1)加入0.5 ml過夜培養的酵母到50 ml YPD培養基中(配方：1L液體培養基含有10g yeast extract，20g polypeptone， 20g D-glucose;固體培養基另外加入2%瓊脂;)。

　　2)30℃培養約6小時，測定OD660為1～2。使用二倍體時，測定OD660為2～4。

　　3)1,000×g離心5分鐘。

　　4)用10 ml Solution A(配方：100 mM Lithium acetate，10 mM Tris-HCl pH 7.5，1 mM EDTA)懸浮沉淀，1,000×g離心5分鐘。

　　5)用Solution A重懸沉淀，直到OD660為150。

　　6)在管內分取100 µl細胞懸浮液，30℃培養1小時。

　　7)加入5 µg載體(環狀或線性DNA)和150 µg Carrier DNA，100℃加熱10分鐘，迅速冷卻。

　　注：pAUR101需使用線性DNA進行轉化。使用環狀DNA會降低轉化效率甚至轉化不成功。pAUR112和pAUR123需使用完整的質粒DNA進行轉化。

　　8)加入850 µl Solution B(配方：取40 g Polyethylene Glycol 4000溶于100 ml Solution A充分溶解，需要現用現配)，輕輕混勻。

　　9)30℃培養30分鐘后，42℃培養15分鐘。

　　10)室溫放置10分鐘。

　　11)5,000 rpm離心1分鐘，用5 ml YPD培養基懸浮沉淀。

　　12)30℃培養6小時~過夜。

　　13)5,000~10,000 rpm離心，用1-10 ml 0.9% NaCl懸浮沉淀。

　　14)在YPD選擇培養基平板(含有一定濃度的AbA，依菌株類型而定)上接種100 µl細胞懸液。30℃培養3-4天后轉化完成。

　　15)挑取陽性轉化子，和/或測定轉化效率(以每微克質粒DNA轉化的菌落數來表示)。